转基因小鼠的「三段进阶」

作者：张馨予

转基因小鼠的「三段进阶」

为什么我的转基因小鼠没有外源基因的表达？

为什么他的转基因小鼠表达这么稳定？

What？！

我用的是转基因 1.0，而他用的是转基因 3.0？

谁来告诉我到底是怎么回事…

来了来了！

今天我们就来说说小鼠转基因的「三段进阶」。

这里我们说的转基因小鼠是指：将一段外源基因随机插入到小鼠基因组中，获得过量表达目的基因的小鼠模型。

转基因 1.0

显微注射法构建完全随机插入转基因小鼠

用显微注射针将线性化的外源 DNA 片段直接注入小鼠受精卵的原核中，使外源基因整合到小鼠基因组中，从而获得转基因小鼠。

优点：

• 过程较简单
• 周期短（3 个月左右获得 founder 小鼠）
• 可进行大片段插入，如 BAC 转基因

缺点：

• 随机整合
• 整合位点随机造成基因组的重排、易位缺失
• 整合位点、多拷贝串联整合都会导致外源基因表达率低甚至不表达
• 外源基因插入可能破坏小鼠內源基因
• 获得 founder 小鼠（基因型鉴定为阳性）后需要建系来筛选外源基因高表达的 line，并且至少需要 2 个表达的 line，相互印证表型才可以

也就是说：

外源 DNA 是怎么整合到小鼠基因组里的，你不知道。

外源 DNA 整合在哪里，你也不知道。

外源 DNA 到底有几个拷贝整合进去了，你还是不知道。

外源 DNA 整合进去以后能不能被表达出来，你就更不知道了。

说白了，全靠 RP。

不过有一点你可以知道，那就是获得的 founder 小鼠越多，筛选到高表达 line 的可能性就越高。

有～那就是转基因 2.0

转基因 2.0

利用 DNA 转座子系统提高转基因的表达阳性率

DNA 转座子的转座遵循「切离-粘贴 (cut and paste)」机制，在转座酶 (transposase) 的催化下，DNA 转座子及中间的 DNA 片段被从原始位置切离并插入到新的基因组位置。

用到转基因小鼠制备的过程中，就是将外源待表达的 DNA 片段构建到转座子质粒中去，并和转座酶 mRNA 一起显微注射到小鼠受精卵中，转座酶将外源 DNA 片段从质粒中切离下来，插入到小鼠基因组中去。

常用于哺乳动物转基因的转座子有：piggyBac、SleepingBeauty (SBll) 和 Tol2。其中，piggyBac 转座子在转座酶的辅助下特异性识别基因组中 5'-TTAA-3'位点，精确地剪切和插入不留下印迹；并且在随机插入基因组的过程中，更倾向于插入有活跃转录的位置；而且转座效率比其他两个高。

转基因小鼠的「三段进阶」

转基因 1.0 vs 2.0 的性能对比

转基因小鼠的「三段进阶」

从这张表格中，你不难发现 2.0 进阶版虽然仍旧不能确定整合位点与外源 DNA 的插入数量，但在相同的制备周期里， 2.0 进阶版提高了外源基因表达的效率，很大程度上能够避免转基因 1.0「竹篮打水一场空」的遗憾，不失为性价比更高的一种方式。

当然，如果你和小编一样，对不确定的事情特别没有安全感，又对自己的 RP 没什么自信的话，一定马上就要发出这样的怒吼了：难道就没有一种既能明确而准确地插入外源基因又能保证表达的方法吗？

当当当当～转基因 3.0 登场啦！

转基因 3.0

定点转基因 —— 「一清二白」的过表达神器

一清：

整合位点清楚

二白：

1）整合拷贝数明白

2）不需要建系，后代小鼠基因型明白

更重要的是：外源基因表达有保证！

Rosa26 位点是目前最为常用的定点整合位点之一。它位于小鼠 6 号染色体，是一个非编码基因，已被证明在大部分组织和细胞中都有表达。表达比较活跃的基因区域因为需要转录因子的进入基因组结构不会被异染色质化，因此在这个区域定点插入外源基因，在各组织中表达的可能性都非常高。所以，Rosa26 被广泛用来作为外源基因表达的安全位点。当然，还有一些其它的安全位点，我们下期再详细介绍哈～

外源 DNA 片段怎么整合到 Rosa26 位点里呢？依靠同源重组。